MUESTRAS DE ESPUTO:

Se trata de una muestra muy útil  que es capas de detectar tumores, o en ocasiones infecciones por diversos microorganismos, lo cual es gran ayuda en el diagnostico y tratamiento de las diferentes enfermedades pulmonares.

Procedimiento:

• la muestra debe ser obtenida en perfectas condiciones.
• correcta higiene vocal lavado y enjuague.
• el paciente deberá arrancar profundamente un esputo secreciones mas inferiores.
• esputo en la primera hora de la mañana.

INDICACIONES PARA LA TOMO DE MUESTRAS:

1. Enjuagar la boca con agua antes de emitir la muestras.
2. Inspirar dos beses profundamente, conteniendo el aliento durante unos pocos segundos después. Inspirar por tercera vez mas y luego toser.
3. Sostener el envase cerca del los labios y depositar la muestra en el con cuidado después de haber generado una tos productiva.
4. Si la muestra es insuficiente, invitar al paciente que tosa de nuevo asta tener una muestra satisfactoria. 
5. Cerrar bien el envase. 
6. Rotular claramente. 
7. Lavar las manos con agua y jabón 

La muestra se puede conservar en una nevera en un tiempo máximo de de 24 horas.
muestra debe enviarse lo antes posible al departamento de microbiologia, aunque si no pudiera realizarse de forma inmediata se recomienda mantener en nevera.

BACILOSCOPIA:

Materiales:

• bata
• microscopio 
• envases para recolección de muestras 
• portaobjetos
• frasco color ámbar para soluciones colorantes 
• dispositivos para desechos 
• bandeja
• un soporte 
• varillas de vidrio u otro soporte inoxidable 
• un mechero 
• plumón de tinta indeleble 
• papel filtro 
• una pinza
• fenol al 5%
• hipoclorito al 1%

PROCEDIMIENTO:

1. Hacer un frotis de la muestra.
2. La fijación al calor asegurará de que el frotis quede adherido al portaobjetos. Un frotis muy delgado puede darle resultados falsamente negativos y un frotis muy grueso puede desprenderse del portaobjetos durante la tinción.
3. Utilizando pinzas, coloque los portaobjetos en una gradilla de tinción con los extendidos hacia arriba. Nunca tiña más de 12 portaobjetos a la vez.
4. Dejar el frotis sobre el puente de tinción.
5. Aplicar fucsina-fenicada.
6. Deje que el colorante permanezca sobre los portaobjetos durante 5 minutos. Mantenga el calor durante este período.
7. Calentar con un mechero hasta la emisión de vapores (3-5 minutos).
8. Se requiere el tiempo adecuado para que la fucsina fenicada penetre y tiña la pared celular de la bacteria. No deje que hierva o se seque el colorante.
9. Lave suavemente el colorante de cada portaobjetos con agua corriente fría hasta que toda la tinción libre quede lavada. Lave suavemente de manera que el extendido no se barra del portaobjetos. Retire el exceso de agua.
10. Decolorar con alcohol-ácido.
11. Cubra cada portaobjetos con la solución decolorante, tal como alcohol ácido y manténgalo sobre el portaobjetos durante 7 minutos. Si no se decolora suficientemente, el contenido del esputo que no son bacilos puede permanecer teñido. Enjuague con agua una vez más los portaobjetos y quite el exceso de agua. Si los portaobjetos aún están rosa, aplique una cantidad adicional de la solución decolorante de 1 a 3 minutos.
12. Aplicar azul de metileno (1 minuto).
13. Aplique la solución de contraste, azul de metileno, durante 1 minuto.
14. Enjuagar con agua
15. Vuelva a enjuagar con un leve chorro de agua e incline cada portaobjetos hasta drenar el exceso de agua. Finalmente, coloque cada portaobjetos en una gradilla a que sequen al aire.
16. Ahora colóquele una pequeñita gota de aceite de inmersión y haga la observación al microscopio con 100 x 100

ANÁLISIS BÁSICO DE SEMINAL

Obtención de la muestra:

• por masturbación el mismo día del examen.
• frasco de vidrio o de platico a temperatura 20-40ºC, de boca amplia.
• solo una eyaculacion 
• se recomienda abstinencia de 3-7 días 
• Maximizar la calidad de la muestra.
• Y reducir la variabilidad
• Lo ideal: recoger la muestra en un cuarto cerca del laboratorio.
•  Evitar choque térmico (20 - 40 ºC).
• Entregarlo lo antes posible (1h).
•  Hacer hincapié:
•  Evitar la perdida.
• Lavarse bien las manos y genitales antes.
• No utilizar preservativo ni el coitus interruptus.
• Usar frascos estériles.

EXAMEN BÁSICO

•   1.Examen macroscópico: licuefacción, aspecto, volumen,
• viscosidad, pH.
• Concentración de espermas y otras células.
• Motilidad
• Vitalidad.
• Morfología espermática.
• Presencia de aglutinaciones.
• Detección de anticuerpos antiespermatozoide unidos a la superficie espermática. 

EXAMEN MACROSCOPICO:

• Viscosidad: 
• el valor de referencia de lo que debe estirar la muestras es de 2cm 
•  si fuera mayor su viscosidad o menor anotaríamos que es anormal.
• Tipos de movilidad:
• Tipo a: movilidad rápida y progresiva, 25 micrómetros seg a 37ºC, 5 veces la cabeza en 1 segundo.
• Tipo b: movilidad progresiva lenta o perezosa
• Tipo c: movilidad no progresiva,  5 micrometros/seg, 1 vez lacabeza por segundo
• Tipo d: inmóvil
• Valor de referencia: 
• A) Lineal progresiva rápida (25% o más)
• B) Lineal progresiva lenta (A + B 50% o más)
• C) In situ
• D) Inmóvil (50% o más valorar vitalidad)

EXAMEN GENERAL DE ORINA (EGO).

INDICACIONES:

Realizar un lavado genital completo, con abundante agua y con jabón, antes de recolectar la muestras en el bote estéril.
Recoja la primera orina de la mañana de la siguiente manera: descarte la primera parte de la muestra se deberá recoger la segunda parte la la misma y se llenara el bote asta la mitad.
cunado haya terminado, ajuste la tapa del envase y limpie cualquier resto de orina que tenga el bote en el exterior.
Ponerle nombre al completo, sexo, edad, fecha y hora de la toma de muestras.
Se deberá entregar a la  recepcionista, bien tapado y en menos de 2 horas de haber tomado la muestra.

EXAMEN FÍSICO:

Color: Normalmente amarillo claro. La orina normalmente puede variar de color, desde casi incoloras asta amarillo oscuro. algunos alimentos como la remolacha y la mora puede darle color rojo a la orina.
Aspecto: normalmente es trasparente puede ser turbio
Densidad: 1.010 a 1.020 aumenta en diabetes mellitus y disminuye en diabetes insípida
pH: Normalmente es ácida.
Glucosa: Normalmente es positivo.

EXAMEN QUÍMICO:

• Cuerpos cetonicos: negativo normalmente y positivo puede presentarse  
• Cetoacidosis diabetica 
• Ayuno prolongado 
• Incapacidad para metabolizar carbohidratos 
• Hiperinsulinismo con hipoglicemia
• agotamiento epatico 
• Proteinas:
• noemalmente se elimina asta el 150mg/24 horas o 10mg por decilitro de orina. Que incluye albumina y otras proteinas. 
• causas de proteinuaria 

SEDIMENTO URINARIO:

 

Materiales:

• guantes 
• cubre bocas
• bata 
• centrifuga 
• microscopio 
• embudo 
• portaobjetos
• cubreobjetos 
• tubos de ensayo 

PROCEDIMIENTO:

1. con ayuda del embudo poner la muestra en un tubo de ensayo 
2. centrifugar la muestra  a 2000 rpm durante 5 minutos 
3. eliminar el liquido sobrante 
4. pasar una pequeña gota del sedimento a un porta objetos y ponerle encima el cubre objetos 
5. examinar observándola en 10x y 40x

EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO 

   Esta prueba diagnostico consiste en analizar las heces de una persona y es una herramienta de gran utilidad de múltiples enfermedades. Sirve para determinar el contenido de las heces si hay mucha grasa, moco o sangre, detecta los posibles microorganismos que estén causando cuadros infecciosos.
EXAMEN PARASITOLOGICO : consiste en una detección de parásitos como:

• Helmintos (gusanos) que se pueden ver a simple vista. 
• Huevos o larvas de estos helmintos, que solo son visibles por medio del microscopio.
• Protozoarios que pueden estar previstos de movilidad o carecer de ella y encontrarse como formas inmóviles, resistentes (quistes).    

EXAMEN BACTERIOLÓGICO: consiste ne identificar, mediante el cultivo de las heces fecales, bacterias causantes de enfermedades.

RECOLECCIÓN DE HECES FECALES:

lo confiabilidad de los resultados depende del cuidado que se tenga al momento de la recolección de de la muestra se devén de tener precaución al momento de la toma de la muestra como son estas :

1.  marcar todas las muestras con el nombre del paciente, edad, sexo, hora y fecha en que se tomo la muestras 
2. la recolección en la cantidad adecuada es necesaria para: 
• facilitar la detección de los parásitos
• evitar que las heces se sequen con demasiada rapidez   
3. el recipiente en que se debe recolectar la muestra debe ser un recipientes estéril de boca ancha y cierre hermético para enviar la muestra se deberá recolectar con una espátula o abatelenguas.
4. las heces se deben examinar menos de una hora de haberla recogido   

LO QUE NO SE DEBE HACER:

1. nunca deje la muestras expuesta al aire libre sin tapa 
2. nuca deje la muestras para examinarlas ( 2 o 3 horas después )
3. nuca acepte muestras mezclados con orina. 
4. nuca coloque el recipiente que contiene la muestra de heces sobre la solicitud del examen.

TÉCNICA DE FAUST 

MATERIALES

•  Porta objetos.
• Cubreobjetos.
• Gasas.
• Tubos de ensayo.  
• Embudo
• Solución acuosa de sulfato de Zn.
• Baso de precipitado
• Abate lenguas

PROCEDIMIENTO:

1. Mezclar bien una porción de materia fecal con agua destilada para preparar una solución homogénea.
2. Después filtrar la solución a través de una gasa doblado en 4 sobre un tubo de ensayo ayudándose con un embudo  
3. Centrifugar la solución a 2000 rpm por 3 minutos.
4. Decantar el liquido sobrante y volver a ponerle agua después se agitara el sedimento y se centrifugara nuevamente.
5. Repetir el procedimiento 2 veces o asta que el liquido sobrante este limpio.
6. Decantar nuevamente el liquido emplazándolo por la misma cantidad de solución de sulfato de zinc al 33% mesclar el sedimento muy bien y centrifugar nueva mente a 2000 rpm por 3 minutos 
7. Ponerle mas sulfato de zinc asta que este al borde del tubo enseguida poner el cubreobjetos en la boca del tubo de ensayo y esperar durante 10 minutos   
8. Poner una gota de lugol en el portaobjetos y encima poner el cubreobjetos
9. Examinar en el microscopio. 

Introducción:
En este blog veremos la técnica para la extracción de sangre, la preparación de frotis, gota gruesa que servirán para la realización de diversas pruebas así como también la realización de coproparasitoscopico.

TOMA DE MUESTRA SANGUÍNEA 

• Podemos obtener muestras de sangre venosa y/o de sangre arterial. 

• Sangre venosa: las sustancias ha analizar están adecuadamente solubles y dispersas.

• Sangre arterial: útil para medir pO2, pCO2 y el pH del plasma.

Preparación del material:

• Guantes.
• Cubre bocas. 
• Gafas protectoras. 
• Gradilla. 
• Campo estéril.
• Algodón o torundas con alcohol al 70%.
• Esparadrapo.
• Agujas.
• Banda elástica o ligadura.
• Tubos de vació con anticuagulante. 
• Tubos de ensalle. 
• Condensador para agujas punzantes.
• Camisa.

Obtención de muestra:

Pasos a realizar:

1. Identificar al pacientes (preguntar su nombre)                                                                                                            verificar si corresponde.                                                                                                                                          el nombre extrema precaución.  
2. Revisar la petición de análisis y comprobar, numero de determinaciones, datos del paciente y servicio solicitante. 
3. Constatar que el paciente este preparado para la toma de muestra (anímica y tecnológicamente). 
4. Anotar al reverso de la solicitud de examen, si el paciente esta tomando medicamento. 
5. Explicar al paciente en que consiste la toma de muestra sanguínea. 
6. Verificar que los materia les a usar este listos y el paciente este cómodo. 
7. Seleccionar el sitio de la vena donde se realizara la punción.
8. Ligar el brazo aproximadamente 4 dedos encima de la flexión del codo o a 10 cm de el. (Nota: ajustar bien alrededor del brazo del paciente y no dejar ligado el brazo mas de 1 o 2 minutos).
9. Palpar la vena con el dedo, escoger aquella que se pueda palpar, el paciente deberá cerra la mano ayudando a visualizar las venas superficiales.
10. Limpiar la zona con torundas con alcohol al 70% en un área de 2 pulgadas con movimientos de adentro asía afuera. 
11. Introducir la aguja, formando un angulo de 15º aproximadamente y se deberá introducir el 20% de la aguja con el bisel asía arriba                                                                                                               usado del sistema de vació: retirar el protector e insertarlo al dispositivo y luego sacar el otro protector y pinchar la vena localizada, sujetar el tubo al vació con la mano, mientras con la otra mano empujarlo hacia el interior del soporte, mientras se llena el tubo coloque el sistema entre su dedo pulgar e indice, los tubos se llenan asta que se acabe el vació que tienen.                                                            cuando los tubos se llenan se saca del soporte, se sustituible por otro y asi asta terminar de obtener los tubos necesarios, los tubos con anticuagulante, mezclarlos inmediatamente invirtiéndolos suavemente 2 o 3 beses. 
12. Retira la ligadura. 
13. Coloca una torunda por donde sea ingresado la aguja a la vena. 
14. Sacar la aguja con un solo movimiento rápido y depositarla en el contenedor de RPBI. 
15. Pedir al paciente que deje de hace el puño y que presione firmemente la torunda por 3 minutos, con el brazo extendido.
16. Verifique el estado del paciente. 
17. Colocar finalmente una torunda de algodón limpia con adhesivo la cual podrá quitarse aproximadamente en 15 minutos.  
18. Despedir al paciente. 

PASOS PARA HACER UN FROTIS Y COMO TEÑIRLO:

MATERIAL:

• Porta objetos. 
• Guantes. 
• Cubre bocas. 
• Tualla de papel.
• Cubetas de tincion 1 set de 3 cubetas.
• Tinciones para hematologia.
• Carro de tincion.

PROCEDIMIENTO:

1. Con la lanceta estéril as una punción en un dedo, o utiliza una gota de sangre del tubo de hemograma.
2. Depositar una gota de sangre en la parte central de un portaobjetos muy limpio (libre de pelusas y grasa).
3. Con un cubreobjetos (tomarlo lateralmente entre las yemas de los dedos) deslizarlo sobre toda la superficie del porta de manera que se pueda obtener una fina película de sangre. El inicio del frotis se denomina cabeza y la parte final del frotis se denomina cola.
4. Esperar a que se seque la lámina, dejarla sobre una rejilla o toalla de papel, con la zona donde está la muestra mirando hacia arriba.

En las cubetas de tinción realizar el siguiente procedimiento:

• 1º cubeta: poner solución May-Grunwall suficiente para cubrir el nivel de los frotis. Proteger las soluciones de la evaporación, para esto mantener apado mientras no se utilice (contiene May-Grunwall en solución alcohólica).
• 2º cubeta: 300 mL de tampón fosfato pH 7.2 con 3 mL de solución MayGrunwall.
• 3º cubeta: 300 mL de tampón fosfato pH 7.2 con 12.5 m

Procedimiento de Tinción:

1. Poner los frotis, con la preparación seca, en el carro de tinción.

2. Poner este carro en la 1º cubeta por 4 minutos.

3. Pasar el carro de tinción a la 2º cubeta, antes estilar el colorante de la 

primera cubeta. Dejar por 1 minuto.

4. Sacar el carro y ponerlo sobre papel absorbente.

5. Poner en la 3º cubeta por 12 minutos.

6. Sacar el carro de la tinción y lavar con agua corriente por 1 minuto.

7. Dejar sobre papel absorbente. Trasladar los frotis a una bandeja para su 

secado. Limpiar los frotis por el reverso, con papel suave.

8. La preparación está lista para la observación microscópica.

OBTENCIÓN DE SANGRE CAPILAR :

MATERIAL:

• Lancetas estériles desechables 
• Guantes
• Cubre bocas
• Tubos capilares
• Torundas con alcohol al 70% 

PASOS PARA EXTRACCIÓN CAPILAR:

1. Seleccionar la superficie palpar de la falange distal de cualquier dedo o superficie planta lateral o medial del talón. 
2. Desinfectar la zona con una torunda con alcohol al 70%.
3. Punzar el dedo con lanceta estéril desechable.
4. Evite comprimir la extremidad para obtener sangre.
5. Poner el tubo capilar ne la gota para que se llene y tratar de que no se llene con aire.( nota: si se llega a meter aire ya no sirve)
6. Sellar muy bien el tubo y mandarlo a centrifugar